Flawiwirus -Flavivirus
Flawiwirus | |
---|---|
TEM micrograph od wirusa żółtej gorączki | |
Model kapsydu wirusa Zika , pokolorowany łańcuchami, wpis PDB 5ire | |
Klasyfikacja wirusów | |
(bez rankingu): | Wirus |
Królestwo : | Rybowiria |
Królestwo: | Orthornavirae |
Gromada: | Kitrinoviricota |
Klasa: | Flasuviricetes |
Zamówienie: | Amarylowirusy |
Rodzina: | Flaviviridae |
Rodzaj: | Flawiwirus |
Gatunek | |
Flavivirus to rodzaj wirusów o dodatniej nici RNA z rodziny Flaviviridae . Rodzaj obejmuje wirusa zachodniego Nilu , wirusa dengi, kleszczowego zapalenia mózgu , wirus żółtej gorączki , wirus Zíka i kilku innych wirusów , które mogą powodować zapalenie mózgu , jak również flawiwirusy owadzich specyficzne (isfs), takie jak wirus środka wiążącego komórki (CFAV ), wirus Palm Creek (PCV) i wirus rzeki Parramatta (PaRV). Podczas gdy flawiwirusy z dwoma gospodarzami mogą infekować zarówno kręgowce, jak i stawonogi, flawiwirusy specyficzne dla owadów są ograniczone do ich kompetentnych stawonogów.
Flawiwirusy są nazwane od wirusa żółtej gorączki; słowo flavus oznacza po łacinie „żółty” , a żółta febra z kolei pochodzi od jej skłonności do wywoływania żółtej żółtaczki u ofiar.
Flawiwirusy mają wiele aspektów często: wspólnego rozmiaru (40-65 nm) symetrii ( zapakowana , dwudziestościan nukleokapsydu ), kwas nukleinowy ( sensownym jednoniciowym RNA około 10,000-11,000 zasad) i wygląd pod mikroskopem elektronowym .
Większość z tych wirusów jest przenoszona głównie przez ugryzienie przez zarażonego stawonoga (komara lub kleszcza), a zatem są klasyfikowane jako arbowirusy . Zakażenia ludzi większością tych arbowirusów są przypadkowe, ponieważ ludzie nie są w stanie replikować wirusa do wystarczająco wysokich mian, aby ponownie zainfekować stawonogi potrzebne do kontynuowania cyklu życiowego wirusa – ludzie są wtedy ślepym żywicielem . Wyjątki od tej reguły są wirus żółtej gorączki , denga wirusów i Zika wirus . Te trzy wirusy nadal wymagają wektorów komarów, ale są wystarczająco dobrze przystosowane do ludzi, aby niekoniecznie zależały od gospodarzy zwierzęcych (chociaż nadal mają ważne drogi przenoszenia zwierząt).
Inne drogi przenoszenia wirusa arbowirusów obejmują obchodzenie się z zakażonymi zwłokami zwierząt, transfuzję krwi, seks, poród i spożywanie niepasteryzowanych produktów mlecznych. Transmisja z kręgowców innych niż człowiek na ludzi bez pośredniego wektorowego stawonoga występuje jednak najczęściej z małym prawdopodobieństwem. Na przykład wczesne testy z żółtą febrą wykazały, że choroba nie jest zaraźliwa .
Znane niearbowirusy z rodziny flawiwirusów rozmnażają się u stawonogów lub kręgowców, ale nie w obu, przy czym jeden dziwny członek rodzaju atakuje nicienie .
Struktura
Flawiwirusy są otoczone i kuliste oraz mają geometrię dwudziestościenną z symetrią pseudo T=3. Średnica cząstek wirusa wynosi około 50 nm.
Genom
Flawiwirusy mają jednoniciowe genomy RNA o dodatnim znaczeniu , które nie są segmentowane i mają długość około 10–11 kpz. Ogólnie genom koduje trzy białka strukturalne (Capsyd, prM i Envelope) i siedem białek niestrukturalnych (NS1, NS2A, NS2B, NS3, NS4A, NS4B, NS5). Genomowy RNA jest zmodyfikowany na końcu 5 'dodatniej nici genomowego RNA o strukturze 1 nasadki (Me 7 -GpppA-Me 2 ).
Koło życia
Flawiwirusy replikują się w cytoplazmie komórek gospodarza. Genom naśladuje komórkową cząsteczkę mRNA we wszystkich aspektach, z wyjątkiem braku ogona poliadenylowanego (poli-A) . Ta cecha pozwala wirusowi wykorzystywać aparaty komórkowe do syntezy białek strukturalnych i niestrukturalnych podczas replikacji . Rybosom komórkowy ma kluczowe znaczenie dla replikacji flawiwirusa, ponieważ dokonuje translacji RNA w podobny sposób do komórkowego mRNA, co skutkuje syntezą pojedynczego poliproteiny .
Komórkowe struktury czapeczki RNA powstają w wyniku działania trifosfatazy RNA z guanylotransferazą , N7- metylotransferazą i 2′-O metylotransferazą. Wirus koduje te aktywności w swoich białkach niestrukturalnych. Białko NS3 koduje trifosfatazę RNA w swojej domenie helikazy . Wykorzystuje miejsce hydrolizy ATP helikazy do usunięcia γ-fosforanu z końca 5' RNA. Domena N-końcowa niestrukturalnego białka 5 (NS5) ma aktywności zarówno N7-metylotransferazy, jak i guanylotransferazy niezbędne do tworzenia dojrzałych struktur czapeczki RNA. Powinowactwo wiązania RNA jest zmniejszane przez obecność ATP lub GTP i wzmacniane przez S-adenozylometioninę . Białko to koduje również 2'-O metylotransferazę.
Po translacji poliproteina jest rozszczepiana przez połączenie proteaz wirusa i gospodarza w celu uwolnienia dojrzałych produktów polipeptydowych . Niemniej jednak komórkowa modyfikacja posttranslacyjna zależy od obecności ogona poli-A; dlatego ten proces nie jest zależny od gospodarza. Zamiast tego poliproteina zawiera funkcję autokatalityczną, która automatycznie uwalnia pierwszy peptyd, enzym specyficzny dla wirusa. Enzym ten jest następnie zdolny do rozszczepienia pozostałej poliproteiny na poszczególne produkty. Jednym z produktów rozszczepionych jest RNA-zależna polimeraza RNA , odpowiedzialna za syntezę cząsteczki RNA o negatywnym znaczeniu. W konsekwencji ta cząsteczka działa jako matryca do syntezy genomowego potomnego RNA.
Flawiwirusa genomowego replikacja RNA zachodzi na nierównych retikulum endoplazmatycznego membran membranowych przedziałów. Następnie składane są nowe cząstki wirusowe. Dzieje się to podczas procesu pączkowania , który jest również odpowiedzialny za akumulację otoczki i lizę komórek .
Kinaza receptorowa sprzężona z białkiem AG 2 (znana również jako ADRBK1) wydaje się być ważna we wnikaniu i replikacji kilku wirusów u Flaviviridae .
Naturalnym żywicielem są ludzie, ssaki, komary i kleszcze. Drogi transmisji to odzwierzęce i ukąszenia.
Rodzaj | Dane gospodarza | Tropizm tkankowy | Szczegóły wejścia | Szczegóły wydania | Witryna replikacji | Miejsce montażu | Przenoszenie |
---|---|---|---|---|---|---|---|
Flawiwirus | ludzie; ssaki; komary; kleszcze | Nabłonek: skóra; nabłonek: nerka; nabłonek: jelito; nabłonek: jądra | Endocytoza z udziałem klatryny | Wydzielanie | Cytoplazma | Cytoplazma | Zoonoza; ugryzienie stawonogów |
Elementy struktury drugorzędowej RNA
Dodatni sensowny genom RNA Flavivirus zawiera nieulegające translacji regiony 5' i 3' (UTR).
5'UTR
5'UTR mają długość 95-101 nukleotydów w wirusie Dengue . Istnieją dwa konserwatywne elementy strukturalne we Flavivirus 5'UTR, duża pętla łodygi (SLA) i krótka pętla łodygi (SLB). SLA składa się w strukturę w kształcie litery Y z boczną pętlą łodygi i małą górną pętlą. SLA prawdopodobnie działa jako promotor i jest niezbędny do syntezy wirusowego RNA. SLB bierze udział w oddziaływaniach między 5'UTR i 3'UTR, które skutkują cyklizacją wirusowego RNA, która jest niezbędna do replikacji wirusa.
3'UTR
3'UTR mają zazwyczaj długość 0,3-0,5 kb i zawierają szereg wysoce konserwatywnych struktur drugorzędowych, które są konserwatywne i ograniczone do rodziny flawiwirusów . Większość analiz przeprowadzono przy użyciu wirusa Zachodniego Nilu (WNV) w celu zbadania funkcji 3'UTR.
Obecnie w obrębie 3'UTR WNV zidentyfikowano 8 struktur drugorzędowych i są one (w kolejności, w jakiej znajdują się w 3'UTR) SL-I, SL-II, SL-III, SL-IV, DB1, DB2 i CRE. Niektóre z tych drugorzędowych struktur zostały scharakteryzowane i są ważne w ułatwianiu replikacji wirusa i ochronie 3'UTR przed trawieniem endonukleazą 5' . Oporność na nukleazy chroni dalszy fragment 3'UTR RNA przed degradacją i jest niezbędna dla cytopatyczności i patogeniczności indukowanej przez wirusy.
- SL-II
Sugerowano, że SL-II przyczynia się do odporności na nukleazy. Może to być związane z inną pętlą spinki do włosów zidentyfikowaną w 5'UTR genomu wirusa japońskiego zapalenia mózgu (JEV). Spinka do włosów JEV jest znacznie nadreprezentowana po infekcji komórek gospodarza i sugerowano, że struktura spinki do włosów może odgrywać rolę w regulacji syntezy RNA.
- SL-IV
Ta drugorzędowa struktura znajduje się w obrębie 3'UTR genomu Flavivirus powyżej elementów DB. Funkcja tej konserwatywnej struktury jest nieznana, ale uważa się, że przyczynia się ona do odporności na rybonukleazę.
- DB1/DB2
Te dwie konserwatywne struktury drugorzędowe są również znane jako elementy pseudo-powtórzenia. Zostały pierwotnie zidentyfikowane w genomie wirusa Dengue i znajdują się obok siebie w obrębie 3'UTR. Wydaje się, że są one szeroko zachowane we wszystkich Flavivirae. Te elementy DB mają strukturę drugorzędową składającą się z trzech helis i odgrywają rolę w zapewnieniu wydajnej translacji. Usunięcie DB1 ma niewielkie, ale znaczące zmniejszenie translacji, ale usunięcie DB2 ma niewielki wpływ. Usunięcie zarówno DB1, jak i DB2 zmniejszyło wydajność translacji genomu wirusa do 25%.
- CRE
CRE jest elementem replikacyjnym działającym w układzie Cis, znanym również jako elementy 3'SL RNA i uważa się, że jest niezbędny w replikacji wirusa poprzez ułatwianie tworzenia „kompleksu replikacyjnego”. Chociaż przedstawiono dowody na istnienie struktury pseudowęzła w tym RNA, wydaje się, że nie jest ona dobrze zachowana wśród flawiwirusów. Wykazano, że delecje 3'UTR flawiwirusów są śmiertelne dla zakaźnych klonów.
Konserwowane szpilkowe cHP
Konserwatywne spinki do włosów (CHP), Struktura została później w kilku Flavivirus genomów i uważa się, że bezpośredni translacji białek kapsydu. Znajduje się tuż za kodonem startowym AUG .
Rola struktur drugorzędowych RNA w produkcji sfRNA
Subgenomowy RNA flawiwirusa (sfRNA) jest przedłużeniem 3'UTR i wykazano, że odgrywa rolę w replikacji i patogenezie flawiwirusa . sfRNA jest wytwarzany przez niepełną degradację genomowego RNA wirusa przez komórki gospodarza 5'-3' egzorybonukleaza 1 (XRN1). Ponieważ XRN1 degraduje wirusowy RNA, zatrzymuje się w pętlach macierzystych utworzonych przez drugorzędową strukturę 5' i 3' UTR. Ta przerwa powoduje powstanie niestrawionego fragmentu genomowego RNA znanego jako sfRNA. sfRNA wpływa na cykl życiowy flawiwirusa w sposób zależny od stężenia. Akumulacja sfRNA powoduje (1) antagonizowanie wrodzonej odpowiedzi immunologicznej komórki, zmniejszając w ten sposób obronę gospodarza przed wirusem (2) hamowanie aktywności XRN1 i Dicer w celu modyfikacji szlaków RNAi, które niszczą wirusowe RNA (3) modyfikacje kompleksu replikacji wirusa w celu zwiększenia reprodukcja wirusowa. Ogólnie rzecz biorąc, sfRNA bierze udział w wielu szlakach, które zagrażają obronie gospodarza i promują infekcję przez flawiwirusy.
Ewolucja
Flawiwirusy można podzielić na dwa klady: jeden z wirusami przenoszonymi przez wektory, a drugi bez znanego wektora. Z kolei klad wektorowy można podzielić na klad przenoszony przez komary i klad przenoszony przez kleszcze. Te grupy można ponownie podzielić.
Grupę komarów można podzielić na dwie gałęzie: jedna zawiera wirusy neurotropowe, często związane z chorobą mózgu u ludzi lub zwierząt gospodarskich. Ta gałąź ma tendencję do rozprzestrzeniania się przez gatunki Culex i posiada rezerwuary ptaków. Druga gałąź to wirusy nieneurotropowe, które są związane z chorobą krwotoczną u ludzi. Zazwyczaj mają one gatunki Aedes jako wektory i żywicieli naczelnych .
Wirusy przenoszone przez kleszcze tworzą również dwie odrębne grupy: jedna jest związana z ptakami morskimi, a druga – kompleks wirusów odkleszczowego zapalenia mózgu – jest związany głównie z gryzoniami .
Wirusy pozbawione znanego wektora można podzielić na trzy grupy: jedna blisko spokrewniona z wirusami przenoszonymi przez komary, które są związane z nietoperzami ; druga, bardziej odległa genetycznie, jest również związana z nietoperzami; a trzecia grupa związana jest z gryzoniami.
Wydaje się prawdopodobne, że transmisja kleszczy mogła pochodzić z grupy przenoszonej przez komary.
U pająka morskiego Endeis spinosa znaleziono częściowy genom flawiwirusa . Sekwencje są spokrewnione z sekwencjami we flawiwirusach specyficznych dla owadów. Nie jest obecnie jasne, jak ta sekwencja wpisuje się w ewolucję tej grupy wirusów.
Dla kilku z tych wirusów dokonano szacunkowych czasów rozbieżności. Pochodzenie tych wirusów wydaje się mieć co najmniej 9400 do 14 000 lat temu. Odmiany dengi ze Starego i Nowego Świata rozeszły się między 150 a 450 lat temu. Europejskie i dalekowschodnie szczepy kleszczowego zapalenia mózgu rozeszły się około 1087 (1610–649) lat temu. Europejskie kleszczowe zapalenie mózgu i chore wirusy lupiące rozeszły się około 572 (844-328) lat temu. To ostatnie oszacowanie jest zgodne z zapisami historycznymi. Wirus Kunjin oddzielił się od wirusa Zachodniego Nilu około 277 (475–137) lat temu. Tym razem odpowiada osiedleniu Australii z Europy. Wydaje się, że grupa japońskiego zapalenia mózgu wyewoluowała w Afryce 2000-3000 lat temu, a następnie rozprzestrzeniła się początkowo na Azję Południowo-Wschodnią, zanim przeniosła się do reszty Azji.
Badania filogenetyczne wirusa Zachodniego Nilu wykazały, że pojawił się jako odrębny wirus około 1000 lat temu. Ten początkowy wirus rozwinął się w dwie odrębne linie rodowe, rodowód 1 i jego liczne profile, które są źródłem przenoszenia epidemii w Afryce i na całym świecie. Linia 2 została uznana za chorobę odzwierzęcą Afryki . Jednak w 2008 r. linia 2, wcześniej obserwowana tylko u koni w Afryce subsaharyjskiej i na Madagaskarze, zaczęła pojawiać się u koni w Europie, gdzie pierwsza znana epidemia dotknęła 18 zwierząt na Węgrzech w 2008 r. Wirus zachodniego Nilu linii 1 wykryto w RPA w 2010 r. u klaczy i jej abortowanego płodu ; poprzednio u koni i ludzi w Afryce Południowej wykryto tylko wirusa zachodniego Nilu linii 2 . 2007 śmiertelny przypadek w wieloryba zabójcy w Teksasie poszerzony znanego zakres gospodarzy z wirusem Zachodniego Nilu obejmuje waleni .
Wydaje się, że wirus gorączki krwotocznej Omsk ewoluował w ciągu ostatnich 1000 lat. Genomy wirusowe można podzielić na 2 klady — A i B. Klad A ma pięć genotypów, a klad B jeden. Te klady rozdzieliły się około 700 lat temu. Wydaje się, że ta separacja miała miejsce w prowincji Kurgan. Następnie klad A został podzielony na klad C, D i E 230 lat temu. Wydaje się, że klad C i E pochodzi odpowiednio z prowincji nowosybirskiej i omskiej. Piżmoszczur Ondatra zibethicus, który jest bardzo podatny na tego wirusa, został wprowadzony na ten obszar w latach 30. XX wieku.
Taksonomia
Gatunek
W rodzaju Flavivirus istnieją 53 zdefiniowane gatunki:
- Wirus Apoi
- Wirus Aroa
- Wirus Bagaza
- Wirus Banzi
- Wirus Bouboui
- Wirus nietoperzy Bukalasa
- Wirus Cacipacore
- Wirus Wyspy Carey
- Wirus Cowbone Ridge
- Wirus nietoperzy Dakar
- Wirus dengi
- Wirus Edge Hill
- Wirus nietoperzy Entebbe
- Gadżety Gully wirus
- Wirus Ilheusa
- Izraelski wirus zapalenia opon i rdzenia kręgowego indyków
- Wirus japońskiego zapalenia mózgu
- Wirus Jugry
- Wirus Jutiapy
- Wirus Kadam
- Wirus Kedougou
- Wirus Kokobera
- Wirus Koutango
- Wirus choroby lasu Kyasanur
- Wirus Langata
- Lopping chory wirus
- Wirus Meaban
- Wirus Modoc
- Wirus leukoencefalopatii Montana myotis
- Wirus zapalenia mózgu doliny Murray
- Wirus Ntaya
- Wirus gorączki krwotocznej Omsk
- Wirus nietoperzy Phnom Penh
- Wirus Powassan
- Wirus Rio Bravo
- Wirus Królewskiej Farmy
- Wirus Saboya
- Wirus zapalenia mózgu Saint Louis
- Wirus Sal Vieja
- Wirus San Perlita
- Wirus Saumarez Reef
- Wirus sepik
- Wirus tembusu
- Wirus kleszczowego zapalenia mózgu
- Wirus Tyuleniy
- Wirus Ugandy S
- Wirus Usutu
- Wirus Wesselsbrona
- wirus Zachodniego Nilu
- Wirus Jaunde
- Wirus żółtej gorączki
- Wirus Yokose
- wirus Zika
Posortowane według wektora
Gatunki i szczepy posortowane według wektorów:
Wirusy przenoszone przez kleszcze
Grupa wirusów przenoszonych przez kleszcze ssaków
- Wirus greckiego zapalenia mózgu kóz (GGEV)
- Wirus Kadam (KADV)
- Wirus Krasnodar (KRDV)
- Wirus kleszcza Mogiana (MGTV)
- Wirus Ngoye (NGOV)
- Wirus Sokuluk (SOKV)
- Hiszpański wirus zapalenia mózgu i rdzenia owiec (SSEV)
- Turecki wirus zapalenia mózgu owiec (TSE)
- Serokompleks wirusa kleszczowego zapalenia mózgu
- Wirus Absettarov
- Wirus kleszcza jelenia (DT)
- Wirus Gadgets Gully (GGYV)
- Wirus Karshi
-
Wirus choroby lasu Kyasanur (KFDV)
- Wirus gorączki krwotocznej Alkhurma (ALKV)
- Wirus Langata (LGTV)
- Chory wirus (LIV)
- Wirus gorączki krwotocznej Omsk (OHFV)
- Wirus Powassan (POWV)
- Wirus Królewskiej Farmy (RFV)
- Wirus kleszczowego zapalenia mózgu (TBEV)
Grupa wirusów przenoszonych przez kleszcze ptaków morskich
- Wirus Kama (KAMV)
- Wirus Meabana (MEAV)
- Wirus rafy Saumarez (SREV)
- Wirus Tyuleni (TYUV)
Wirusy przenoszone przez komary
- Bez znanego żywiciela kręgowca
- Okład do łączenia komórek
- Flawiwirus Aedes galloisi
- Wirus Barkedji
- Wirus Calbertado
- Wirus Chaoyang
- Flawiwirus Culex
- Flawiwirus Culex theileri
- Flawiwirus Culiseta
- Wirus Donggang
- Wirus Hanko
- Wirus Ilomantsi
- Wirus rzeki Kamiti
- Wirus Lammi
- Wirus komarów Marisma
- Wirus Nakiwogo
- Wirus Nhumirim
- Wirus Nienokoue
- Wirus Nounané
- Wirus Palm Creek
- Flawiwirus Panmunjeom
- Wirus Quang Binh
- Grupa wirusów Aroa
- Wirus Aroa (AROAV)
- Wirus Bussuquara (BSQV)
- Wirus iguapa (IGUV)
- Wirus Naranjal (NJLV)
- Grupa wirusa dengi
- Wirus dengi (DENV)
- Wirus Kedougou (KEDV)
- Grupa wirusów japońskiego zapalenia mózgu
- Wirus Cacipacore (CPCV)
- Wirus Koutango (KOUV)
- Wirus Kunjin
- Wirus Ilheusa (ILHV)
- Wirus japońskiego zapalenia mózgu (JEV)
- Wirus zapalenia mózgu doliny Murray (MVEV)
- Wirus zapalenia mózgu St. Louis (SLEV)
- Wirus Usutu (USUV)
- Wirus Zachodniego Nilu (WNV)
- Wirus Jaunde (YAOV)
- Grupa wirusów Kokobera
- Wirus Kokobera (KOKV)
- Nowy wirus Mapoon (NMV)
- Wirus Stratforda (STRV)
- Grupa wirusów Ntaya
- Wirus Bagaza (BAGV)
- Wirus Baiyangdian (BYDV)
- Wirus zespołu opadania kaczych jaj (DEDSV)
- Wirus Ilheusa (ILHV)
- Izraelski wirus zapalenia opon i rdzenia kręgowego indyków (ITV)
- Wirus Jiangsu (JSV)
- Flawiwirus warstwowy
- Wirus Ntaya (NTAV)
- Wirus Rocio (ROCV)
- Wirus Sitiawan (STWV)
- Wirus T'ho
- Wirus Tembusu (TMUV)
- Grupa wirusów Spondweni
- Wirus Spondweniego (SPOV)
- Wirus Zika (ZIKV)
- Grupa wirusów żółtej gorączki
- Wirus Banzi (BANV)
- Wirus Bamaga (BGV)
- Wirus Bouboui (BOUV)
- Wirus Edge Hill (EHV)
- Wirus rzeki Fitzroy
- Wirus Jugry (JUGV)
- Wirus Saboya (SABV)
- Wirus Sepik (SEPV)
- Wirus Ugandy S (UGSV)
- Wirus Wesselsbrona (WESSV)
- Wirus żółtej gorączki (YFV)
- Inni
- Wirus jaskini Batu
- Wirus nietoperzy bukulasa
- Wirus Nanay
- Wirus Rabensburga (RABV)
- Wirus Sitiawan
Wirusy bez znanego wektora stawonogów
- Wirus nietoperzy Tamana (TABV)
- Grupa wirusów Entebbe
- Wirus nietoperzy Entebbe (ENTV)
- Wirus Yokozy (YOKV)
- Grupa wirusów Modoc
- Wirus Apoi (APOIV)
- Wirus Cowbone Ridge (CRV)
- Wirus jutiapy (JUTV)
- Wirus Modoc (MODV)
- Wirus Sal Vieja (SVV)
- Wirus San Perlita (SPV)
- Grupa wirusów Rio Bravo
- Wirus nietoperzy Bukalasa (BBV)
- Wirus wyspy Carey (CIV)
- Wirus nietoperzy z Dakaru (DBV)
- Wirus leukoencefalopatii Montana myotis (MMLV)
- Wirus nietoperzy Phnom Penh (PPBV)
- Wirus Rio Bravo (RBV)
Wirusy inne niż kręgowce
- Wirus Assama
- Wirus Bamaga
- Crangon Crangon flavivirus
- Wirus Cuacua
- Wirus Donggang
- Flawiwirus kałamarnicy świetlikowej
- Flawiwirus Gammarus chevreuxi
- Flawiwirus Gammarus Pulex
- Wirus karumby (KRBV)
- Wirus Hanko
- Wirus Haslams Creek
- Wirus Mac Peak (McPV)
- Wirus komarów Marisma
- Flawiwirus śródziemnomorski ochlerotatus
- Flawiwirus Menghai
- Wirus Nakiwogo (NAKV)
- Wirus Nanay
- Wirus Nounané
- Ochlerotatus caspius flavivirus
- Wirus Palm Creek
- Wirus rzeki Parramatta
- Flawiwirus kałamarnicy południowej
- Wirus mątwika sojowego 5
- Flawiwirus Xishuangbanna Aedes
Wirusy znane tylko z sekwencjonowania
Szczepionki
Bardzo udana szczepionka 17D przeciwko żółtej febrze , wprowadzona w 1937 r., spowodowała dramatyczne zmniejszenie aktywności epidemicznej.
Skuteczne inaktywowane szczepionki przeciwko japońskiemu zapaleniu mózgu i kleszczowemu zapaleniu mózgu zostały wprowadzone w połowie XX wieku. Niedopuszczalne zdarzenia niepożądane skłoniły do zmiany japońskiej szczepionki przeciwko japońskiemu zapaleniu mózgu inaktywowanej myszy mózg na bezpieczniejsze i skuteczniejsze szczepionki przeciw japońskiemu zapaleniu mózgu drugiej generacji. Mogą one znaleźć szerokie zastosowanie, aby skutecznie zapobiegać tej ciężkiej chorobie w ogromnych populacjach Azji – północnej, południowej i południowo-wschodniej.
Wirusy dengi powodują wiele milionów infekcji rocznie z powodu przenoszenia przez udanego globalnego wektora komarów. Ponieważ kontrola komarów zawiodła, kilka szczepionek na dengę znajduje się na różnych etapach rozwoju. CYD-TDV, sprzedawany pod nazwą handlową Dengvaxia, to czterowalentna chimeryczna szczepionka, która łączy geny strukturalne czterech wirusów dengi ze szkieletem żółtej gorączki 17D. Dengvaxia jest zatwierdzona w pięciu krajach.
Bibliografia
Dalsza lektura
- Kuno G, Chang GJ, Tsuchiya KR, Karabatsos N, Cropp CB (styczeń 1998). „Filogeny z rodzaju Flavivirus ” . J Virol . 72 (1): 73–83. doi : 10.1128/JVI.72.1.73-83.1998 . PMC 109351 . PMID 9420202 .
- Zanotto, PM; Goulda, EA; Gao, GF; Harvey, PH; Holmes, EC (1996). „Dynamika populacji flawiwirusów ujawniona przez filogenezy molekularne” . Materiały Narodowej Akademii Nauk . 93 (2): 548–553. Kod Bibcode : 1996PNAS...93..548Z . doi : 10.1073/pnas.93.2.548 . PMC 40088 . PMID 8570593 .
- Kalitzky, Matthias (2006). Biologia molekularna flawiwirusa . Wymondham: Horizon Bioscience. Numer ISBN 978-1-904933-22-9.
- Shi, Pei-Yong (2012). Wirusologia molekularna i zwalczanie flawiwirusów . Norfolk, Wielka Brytania: Caister Academic Press. Numer ISBN 978-1-904455-92-9.
- Murray, Katarzyna L.; Jones, Christopher T.; Ryż, Charles M. (2008). „Architekci montażu: role niestrukturalnych białek Flaviviridae w morfogenezie wirionów” . Recenzje przyrody Mikrobiologia . 6 (9): 699–708. doi : 10.1038/nrmicro1928 . PMC 2764292 . PMID 18587411 .
Zewnętrzne linki
- MicrobiologyBytes: Flawiwirusy
- Instytut Chorób Tropikalnych Novartis (NITD) – Badania nad gorączką denga w Instytucie Chorób Tropikalnych Novartis (NITD)
- Dengueinfo.org – Depozytariusz danych sekwencji genomowej wirusa dengi
- Strefa wirusowa : Flawiwirus
- Baza danych i analiza patogenów wirusów (ViPR): Flaviviridae
- Wpis Rfam dotyczący pętli macierzystej Flavivirus 3'UTR IV
- Wpis Rfam dotyczący elementu Flavivirus DB
- Wpis Rfam dotyczący elementu replikacji działającego w układzie cis (CRE) Flavivirus 3' UTR
- Wpis Rfam dotyczący struktury spinki do włosów wirusa japońskiego zapalenia mózgu (JEV)